植物ＤＮＡ的ＣＴＡＢ提取法：
1 称取新鲜叶片2-3ｇ，剪碎放入研钵中，在液氮中研磨成粉末。
2 将粉末转移到的加有7ｍｌ经预热的1 5×ＣＴＡＢ提取缓冲液15ｍｌ离心管中，迅速混匀后置于65℃水浴中，温育30ｍｉｎ。
3 取出离心管，冷却至室温，加入氯1仿/异戊1醇(24:1)，充分混匀，室温下2300×ｇ离心20ｍｉｎ。
4 将上清转移至另一新的15ｍｌ离心管中，加入1/10体积10%的ＣＴＡＢ和等体积的氯1仿/异戊1醇。充分混匀，2300×ｇ离心20ｍｉｎ。
5 转移上清至另一新的15ｍｌ离心管中，加入等体积1%的ＣＴＡＢ沉淀缓冲液，轻轻摇晃至形成ＤＮＡ絮状沉淀。1000×ｇ离心10ｍｉｎ，使ＤＮＡ沉淀于管底。
6 加入1 5-2ｍｌ的1ｍｏｌ/ＬＮａＣｌ及5μｌＲＮａｓｅ置于56℃水浴中过夜。待ＤＮＡ完全溶解后，加2-3ｍｌ4℃预冷的95%的冰乙醇使ＤＮＡ沉淀，挑出ＤＮＡ，置于1 5ｍｌ离心管中，用70%乙醇清洗30ｍｉｎ，用离心机甩5ｓ，倒出70%乙醇，再用95%乙醇浸泡5ｍｉｎ，倒出95%乙醇，在超净工作台上吹干。
7 将风干的ＤＮＡ直接在4℃保存备用或溶于100μｌＴＥ溶液中于-20℃保存。
适用于ＰＣＲ研究的快速提取法：
1 田间剪取植株新鲜叶片5-10ｍｇ(约2ｃｍ长)左右，新鲜叶片放于1 5ｍｌ离心管中，存于冰盒中，根据样品号贴上相应的标签。
2 用剪刀将叶片***剪细(约0 5ｃｍ长)放在点穴式研板中。
3 加入400μｌＤＮＡ提取缓冲液，用玻棒将叶***研细，直到液体变成深绿色即可。
4 再加400μｌＤＮＡ提取缓冲液，混合均匀，转入一新的1 5ｍｌ离心管(贴上相应的编号)。
5 加400μｌ氯1仿，混合均匀后，2400×ｇ离心30ｓ，将上清液转入一支新的1 5ｍｌ离心管(贴上相应的编号)。
6 加800μｌ无水乙醇，混匀，RNA上样Buffer，2400×ｇ离心3ｍｉｎ。弃上清。
7 70%乙醇冲洗，风干。
8 用50μｌＴＥ缓冲液溶解，存于-20℃。
9 取1μｌ用于ＰＣＲ分析。
PCR产物的回收（胶回收***盒）
1.胶回收的目的（1）去除非特异性扩增的产物（2）去除多余的底物（3）去除多余的Taq酶（4）得到目的片段
2.胶回收的过程（1）切胶：紫外下切胶，称重。之后用头将胶块捣碎。切胶的刀片建议选用一次性刀片，实验台等也尽可能用乙醇擦拭干净。可通过空EP管与装胶EP管质量的差值计算胶的质量。注意切胶时尽可能避免切到条带外的凝胶，且避免紫外时间过长。别忘记胶条有厚度，前后多余的部分也尽量切除。（2）溶胶：每1 mg胶加入1 μL膜结合液（MB），按比例1:1加入MB，55℃水浴溶解。每1~2 min震荡混匀，待溶解后至少在水浴中保持1~2 min，保证胶块完全溶解。在电泳过程中，DNA会与大分子的多糖紧密结合，凝胶的种类和质量不同，DNA与之结合力也不同，只有凝胶充分溶解DNA才能充分释放。否则，凝胶将与DNA一起沉淀下来，洗脱后将影响回收结果的纯度。（3）结合：将溶胶转移至纯化柱内，12000 rpm离心1 min，倒掉收集管中的废液，将纯化柱重新插回收集管中。胶块完全溶解后建议将胶液温度降至室温再上柱，因为纯化柱在温度较高时结合DNA的能力较弱。
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