哺乳动物的转染技术在60年代末70年代初即已引入。
将外源DNA 导入哺乳动物细胞的方法大致可分为两大类，即生物方法和物理化学方法。物理化学方法中常用的有磷酸钙法、显微注0射、电穿孔、脂质体介导的转染，以及***近出现的以高分子聚合物为载体的***传递技术。生物方法则主要是以病毒作为载体，通过病毒感0染的方式将外源DNA 导入到细胞中， 其中以逆转录病毒及腺病毒转染系统***为常用。
1. 将上述复合物直接加入到细胞培养基中，转染***盒，轻摇细胞板或用加样器吸打混匀。备注：转染复合物可直接加入含血0清的细胞培养基中进行转染。在极0少情况下会出现贴壁细胞脱落现象，可先从待转染细胞孔中吸取 500μl 培养基与转染复合物预混后再加入细胞中。若在细胞瓶中进行转染，直接加入到无细胞贴壁的对面或侧面并摇匀即可。
2. 将细胞板移至 37oC/5% CO2 孵箱中进行培养。备注：无需在转染后 4~6 小时补加血0清或更换培养基。
3. 24~72 小时后根据实验需要进行瞬时表达分析或稳定细胞系加压筛选。
重要提示
1. 与常规转染***不同，使用 QuickShuttle 可在贴壁细胞传代后尚未贴壁时直接进行转染（立传立转），从而可节省 18~24 小时的转染前细胞培养时间。
2. QuickShuttle 极大简化了转染操作，转染***和质粒混合后无需室温静置孵育，可直接加入含血0清的细胞培养基中进行转染，而且无需在转染后补加血0清或更换培养基，整个转染操作可在一分钟内完成。
3. 立传立转、一分钟完成转染操作和高转染效率等优点使得部分使用 QuickShuttle 的转染实验可在细胞传代后 24 小时内完成，从而比常规转染***节约 24~48 小时。
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