




关于细胞培养的常见问题:
Q: 细胞在培养过程中出现碎片如何处理?
A: 贴壁细胞在移除原培养液后,细胞实验外包,用 PBS 冲洗 2-3 遍;悬浮细胞离心移除原培养液后,细胞实验,加入 PBS 重悬,细胞实验外包公司,离心移除 PBS; 一般建议重复上述步骤 2-3 遍,用 800-1000rpm 离心 3-5 分钟。
Q:细胞冻存能放在 -80℃ 保存吗?
A:长期保存的细胞应当放在液氮(-196℃)中保存,短时间(一般 1 周-2 周)可以存放在 -80℃。
Q:培养瓶是用密封盖好,还是用透气盖好?
A:都可以。只是在使用密封盖培养瓶时,瓶盖旋至约 2/3,不要完全拧紧,预留约 1/3 以便细胞可以透气;有些品牌的密封盖培养瓶的瓶盖上有适合位置指示标志。
Q:何谓 FBS,FCS,CS,HS?
A: Fetal bovine serum(FBS)和 Fetal Calf Serum(FCS)之间没有区别,都是指胎牛;FCS 不是正规命名,尽量不使用。Calf Serum(CS)则是指小牛。Horse Serum(HS)则是指马。
脂质体瞬时转染
1、细胞H9C2 (Hela) 6孔板Hela1x10°/孔。
2、转染前换上没有抗sheng素的DMEM+胎清(10%)。
3、将质粒DNA (约2-4ul) 2ul 加入dorf管中+DMEM至50u1。
4、脂质体5ul补培养基至50ul混匀静止5分钟(质粒与脂质体比例为1:2或1.5:2.5)。
5、将含有脂质体的培养基与含质粒的混合总体积100ul室温放置30分钟。
6、吸取混合物均匀加入每一个孔中。
7、将6孔板放入培养箱中继续培养6小时后吸出培养基换上新配置的培养基DMEM6ml+胎清600u1+三抗300u1。
8、培养24小时。
细胞培养中常见的污染及解决方法
支原体污染
支原体是隐蔽的污染物,不能通过过滤去除。显微镜下没有任何可见的支原体污染迹象,比如细胞病变和浊度或 pH 值变化(即使在严重污染的培养基中),细胞实验外包哪家好,这样就会导致我们产生错误的安全感。而在牛中,支原体是常见的微生物之一。
解决方法:通常的过滤灭菌方法对支原体没有影响。细胞一旦被支原体污染,特别是对重要的细胞系,必须去除支原体,一般的方法有、抗和抗与补体联合。值得注意的是,支原体很突出的结构特征是没有细胞壁。因此,它对作用于细胞壁的生物合成(如 β-内酰胺类、万古等)完全不敏感,并且通常对多粘菌素、利福平和类具有耐药性。相反,四环素类和大环内酯类对支原体的***作用很强,而氨基糖苷类和氯的***作用较弱。

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