




自噬(autophagy)是细胞受到刺激后吞噬自身的细胞质或细胞器,终将吞食物在溶酶体内降解的过程,自噬体(autophagosome)为双层膜包被的圆形或椭圆形结构,内含细胞质、长寿蛋白质和异常蛋白聚集物,损伤或多余细胞器如线粒体、粗面内质网和微体、
病毒和***等。单丹磺酰尸胺(Dansylcad***erine,MDC是一种荧光色素,是嗜酸性染色剂,通常被于检测自噬体形成的特异性标记染色剂,其检测激发滤光片波长355nm ,阻断滤光片波长512nm。Leagene MDC染色液适用于培养细胞的自噬染色,可与EB合用双染。
大鼠脂肪的分离
将***切取的大鼠脂肪***尽量剪碎后移至离心管,其余步骤与人脂肪的分离一致。
经***切除获得的大鼠皮下脂肪***消化后原代培养24 h,且肉眼观察会发现培养瓶底部贴附着一层网状薄膜,轻轻摇晃培养瓶可使这层网状薄膜从瓶壁上脱落,吉林细胞,镜下观 察发现大部分细胞都附着于这层膜上,通过术获取的人脂肪***消化后则无此现象。增加胶原酶的量和消化时间也无法避免,取材时的或脂肪间结缔***未被完全消化,穿过细胞筛进入了培养瓶并沉淀于瓶底部形成的。胶原蛋白酶虽然可以特异性水解胶原蛋白的三维螺旋结构,但不会损伤其他蛋白质。处理方法是37 ℃下用胰蛋白酶 消化5 min。然后利用40 μm的细胞筛过滤后传代。 根据作者的经验,每毫升***切除的大鼠脂肪可分离基质血管成分细胞约1.81×106个。原代培养2.24×10^7个大鼠基质血管成分细胞,40 h后传代时约剩余 6.2×10^6个细胞,细胞剩余率27%。
2、快速脂质体转染法操作步骤如下 [方法二]:
(1) 以 5×105 细胞/孔接种 6 孔板 (或 35 mm 培养皿) 培养 24 小时,使其达到 50~60% 板底面积。
(2) 在试管中配制 DNA/脂质体复合物方法如下:
①在 1 mL 无 DMEM 中稀释 PSV2-neo 质粒 DNA 或供体 DNA。
②旋转 1 秒钟,再加入脂质体悬液,单细胞测序,旋转。
③室温下放置 5~10 分钟,细胞系,使 DNA 结合在脂质体上。
(3) 弃去细胞中的旧液,用 1 mL 无 DMEM 洗细胞一次后弃去,向每孔中直接加入 1 mL DNA/脂质体复合物,37℃ 培养 3~5 小时。
(4) 再于每孔中加入 20%FCS 的 DMEM,继续培养 14~24 小时,
(5) 吸出 DMEM/DNA/脂质体混合物加入新鲜 10%FCS 的 DMEM,2 mL/孔,再培养 24~48 小时。
(6) 用细胞刮或消化法收集细胞,以备分析鉴定。
3、稳定的脂质体转染方法如下:
(1) 接种细胞同前,细胞长至 50% 板底面积可用于转染。
(2)DNA/脂质体复合物制备转染细胞同前 (2)、(3) 步骤。
(3) 在每孔中加入 1 mL、20%FCS 的 DMEM,感受态细胞,37℃ 培养 48 小时。
(4) 吸出 DMEM,用 G418 选择培养液稀释细胞,使细胞生长一定时间,筛选转染,方法参照细胞筛选法进行。

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