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多肽的分离制备，如何上量？如何增大分离度?

反相HPLC应当是很好的分离小肽方法，工业制备色谱哪个稳定性好，用CH3CN或CH3OH：H2O（95：5）做流动相，看保留如何，若无保留，建议改用其他色谱方法进行分离。

关于多肽的分离，首先要知道它的分子量大小，然后选择不同类型的填料，工业制备色谱费用，如孔径的大小。我们先在分析柱（4.6mm内径）上做一下实验，找到很大的分离度，这一过程的难度是很大的，要不断地改变流动相和固定相，然后再线性或非线性放大到制备，放大的倍数按分析柱的实验结果。分离后可以通过冷冻干燥得到固体。

还可以考虑离子交换来分l离。

样品如果溶解度太低如何上制备HPLC？

（1）了解一下样品的性质，根据其酸碱性，极性等性质，通过调节溶剂的pH值等，以达到较好的溶解度。

（2）样品可能某种晶型难溶，这样可以加入其他溶剂以助溶。

（3）不是一定要用流动相来溶解样品，对溶解度差的样品，工业制备色谱报价，可以选择***，THF或DMSO等溶解样品。特别是DMSO，对一般的化合物溶解度都很好。并且在反相柱上不保留，不会造成干扰。而且DMSO的洗脱能力很弱，一般不会影响峰型。

（4）可以固体上样。

制备色谱纯化中流速该如何设定

在制备纯化工艺中，想要准确、合理的确定流动相的流速范围，工业制备色谱，需要结合一定的理论基础和实际的纯化经验。为了使很多新接触制备纯化的用户能够更快、更好的对流速设定，三泰科技的Flash产品都向客户提供佳的流速范围，尤其是SepaBean? machine快速液相制备色谱系统可智能推荐的流速参数，更快更便捷的处理常规的样品分离。但是对于非常规、比较难分离的样品就必须根据分离情况进行适当的流速调整才能成功达到分离要求。今天我们就从原理和纯化经验上探讨如何找到合适的流速，更好的分离那些让人的样品。