动物模型的设计原则
适用性和可控性
供***实验研究用的动物模型，在时，应尽量考虑到今后临床应用和便于控制其***的发展，以利于研究的开展。如雌能终止大鼠和小鼠的早期，但不能终止人的。因此，选用雌大鼠和小鼠终止早期的模型是不适用的，因为在大鼠和小鼠筛选带有雌活性的时，常常会发现这些能终止，似乎可能是有效的避孕药，但一旦用于人则并不成功。所以，如果知道一个化合物具有雌活，用这个化合物在大鼠或小鼠观察终止的作用是没有意义的。又如选用大小鼠作作实验性腹膜炎就不适用，因为它们对革兰氏阴性***具有较高的抵抗力，很不容易造成腹膜炎。有的动物对某致病因子特别敏感，极易，也不适用。如狗腹腔***粪便滤液引起腹膜炎很快（ 80%24 小时内），来不及做实验观察，而且粪便剂量及***菌株不好控制，因此不能准确重复实验结果。
实验动物的给法
(一)***给药法
1. 皮射 ***时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持将针头刺入,固定后即可进行***。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部***；蛙可在脊背部淋巴囊***；狗多在大腿外侧***，拔针时，轻按片刻，防药液逸出。
2. 皮内*** 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。 如将一定量的性同位素溶液、颜料或致炎物质、等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物***部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可***药液。***后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉*** 当给动物***不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的时,常采用肌肉***。肌肉***一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。
***时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可***。给大、小鼠作肌肉***时，选大腿外侧肌肉进行***。
4. 腹腔*** 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。
5. 静脉*** 是将药液直接***于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。
小鼠、大鼠的静脉***：常采用尾静脉***。鼠尾静脉共有3根， 左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张, 并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈,***时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。
根据GB19489-2004实验室 生物 安全通用要求,动物实验室的 生物 安全要点:
动物实验室的生物安全防护设施应参照BSL1-4实验室的要求，还应考虑对动物呼吸、排泄、毛发、抓咬、挣扎、逃逸、动物实验（如染毒、***检查、取样、解剖、检验等）、动物饲养、动物及排泄物的处置等过程产生的潜在生物危害的防护。应特别注意对动物源性气溶胶的防护，例如对动物的剖检应在负压剖检台上进行。
应根据动物的种类、身体大小、生活习性、实验目的等选择具适当防护水平的、专用于动物的、符合***相关标准的 生物安全柜 、动物饲养设施、动物实验设施、消毒设施和清洗设施等。
实验室建筑应确保实验动物不能逃逸，非实验室动物（如野鼠、昆虫等）不能进入。实验室设计（如空间、进出通道等）应符合所用动物的需要。
动物实验室空气不应循环。动物源气溶胶应经适当的过滤/消毒后排出，不能进入室内循环。
如动物需要饮用无菌水，供水系统应可安全消毒。
动物实验室内的温度、湿度、照度、噪声、洁净度等饲养环境应符合***相关标准的要求。
血管钙化大鼠模型
方法:将16只雄性SD大鼠随机分为正常组和钙化组,每组8只,4周后取材检测血管钙化程度,用钙离子测试盒、碱性磷酸酶(ALP)***盒测定大鼠主动脉钙含量和ALP活性,用放she免yi法检测大鼠血浆和主动脉***salusin-a含量结果与对照组比较,钙化组大鼠主动脉中膜弹性纤维间可见钙盐沉积,血浆和主动脉***中ALP、钙含量明显升高(P lt; 0.01),salusin-a的表达明显降低(P lt;0.01).结论血管钙化大鼠模型salusin-a的表达下调.
